ऊतक विज्ञान

ऑप्टिकल माइक्रोस्कोप के स्टेज पर रखा गया ऊतक विज्ञान का नमूना

माइक्रोस्कोप के नीचे देखा गया हेमेटोक्सिलिन और इओसिन से रंजित मानव फेफड़े का ऊतक

ऊतक विज्ञान (Histology), जिसे सूक्ष्म शारीरिक रचना (microscopic anatomy), सूक्ष्म शरीर रचना विज्ञान (microanatomy) या हिस्टोएनाटॉमी भी कहा जाता है, जीव विज्ञान की वह शाखा है जो जैविक ऊतकों की सूक्ष्म शारीरिक रचना का अध्ययन करती है। ऊतक विज्ञान, स्थूल शारीरिक रचना (gross anatomy) का सूक्ष्म समकक्ष है, जो माइक्रोस्कोप के बिना दिखाई देने वाली बड़ी संरचनाओं को देखता है।

ऐतिहासिक रूप से, सूक्ष्म शारीरिक रचना को ऑर्गेनोलॉजी (अंगों का अध्ययन), हिस्टोलॉजी (ऊतकों का अध्ययन), और साइटोलॉजी (कोशिकाओं का अध्ययन) में विभाजित किया गया था, हालांकि आधुनिक उपयोग में इन सभी विषयों को ऊतक विज्ञान के क्षेत्र के अंतर्गत रखा गया है। चिकित्सा में, हिस्टोपैथोलॉजी ऊतक विज्ञान की वह शाखा है जिसमें रोगग्रस्त ऊतकों की सूक्ष्म पहचान और अध्ययन शामिल है। जीवाश्म विज्ञान (paleontology) के क्षेत्र में, पेलियोहिस्टोलॉजी शब्द का अर्थ जीवाश्म जीवों का ऊतक विज्ञान है।

जैविक ऊतक

पशु ऊतक वर्गीकरण

মূল নিবন্ধ: Anatomy#Animal tissues

पशु ऊतकों के चार मूल प्रकार हैं: पेशी ऊतक, तंत्रिका ऊतक, संयोजी ऊतक, और उपकला ऊतक। सभी पशु ऊतकों को इन चार प्रमुख ऊतक प्रकारों के उपप्रकार माना जाता है (उदाहरण के लिए, रक्त को संयोजी ऊतक के रूप में वर्गीकृत किया गया है, क्योंकि रक्त कोशिकाएं एक बाह्यकोशिकीय मैट्रिक्स, प्लाज्मा में निलंबित रहती हैं)।

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पादप ऊतक वर्गीकरण

पादप तने का ऊतक वैज्ञानिक खंड (Alliaria petiolata)

মূল নিবন্ধ: Plant Anatomy

पौधों के लिए, उनके ऊतकों का अध्ययन पादप शरीर रचना विज्ञान (plant anatomy) के क्षेत्र के अंतर्गत आता है, जिसमें निम्नलिखित चार मुख्य प्रकार हैं:

• त्वचीय ऊतक
• संवहनी ऊतक
• भरण ऊतक
• विभज्योतक ऊतक

चिकित्सा ऊतक विज्ञान

हिस्टोपैथोलॉजी ऊतक विज्ञान की वह शाखा है जिसमें रोगग्रस्त ऊतकों की सूक्ष्म पहचान और अध्ययन शामिल है। यह शारीरिक विकृति विज्ञान (anatomical pathology) और सर्जिकल पैथोलॉजी का एक महत्वपूर्ण हिस्सा है, क्योंकि कैंसर और अन्य बीमारियों के सटीक निदान के लिए अक्सर ऊतक के नमूनों की हिस्टोपैथोलॉजिकल जांच की आवश्यकता होती है। प्रशिक्षित चिकित्सक, जिन्हें अक्सर पैथोलॉजिस्ट कहा जाता है, हिस्टोपैथोलॉजिकल जांच करते हैं और अपने अवलोकनों के आधार पर नैदानिक जानकारी प्रदान करते हैं।

व्यवसाय

ऊतक विज्ञान का वह क्षेत्र जिसमें सूक्ष्म जांच के लिए ऊतकों की तैयारी शामिल है, उसे हिस्टोटेक्नोलॉजी कहा जाता है। जांच के लिए ऊतक वैज्ञानिक नमूने तैयार करने वाले प्रशिक्षित कर्मियों के लिए नौकरी के शीर्षक कई हैं और इनमें हिस्टोटेक्निशियन, हिस्टोटेक्नोलॉजिस्ट, ऊतक विज्ञान तकनीशियन और प्रौद्योगिकीविद, चिकित्सा प्रयोगशाला सहायक, और बायोमेडिकल वैज्ञानिक शामिल हैं।

नमूना तैयार करना

अधिकांश ऊतक वैज्ञानिक नमूनों को सूक्ष्म अवलोकन से पहले तैयारी की आवश्यकता होती है; ये विधियां नमूने और अवलोकन की विधि पर निर्भर करती हैं।

स्थिरीकरण (Fixation)

মূল নিবন্ধ: Fixation (histology)

जीवाश्म अकशेरुकी का ऊतक वैज्ञानिक खंड। ऑर्डोविशियन ब्रायोज़ोअन।

रासायनिक स्थिरीकरण का उपयोग ऊतकों और कोशिकाओं की संरचना को संरक्षित करने और बनाए रखने के लिए किया जाता है; स्थिरीकरण ऊतकों को कठोर भी करता है जो माइक्रोस्कोप के नीचे अवलोकन के लिए आवश्यक ऊतक के पतले खंडों को काटने में सहायता करता है। स्थिरीकरण एजेंट आमतौर पर प्रोटीन को अपरिवर्तनीय रूप से क्रॉस-लिंक करके ऊतकों (और कोशिकाओं) को संरक्षित करते हैं। प्रकाश माइक्रोस्कोपी के लिए सबसे व्यापक रूप से उपयोग किया जाने वाला स्थिरीकरण एजेंट 10% न्यूट्रल बफर्ड फॉर्मेलिन, या NBF (फॉस्फेट बफर्ड सलाइन में 4% फॉर्मेल्डिहाइड) है।

इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी के लिए, सबसे अधिक उपयोग किया जाने वाला स्थिरीकरण एजेंट ग्लूटरलडिहाइड है, जो आमतौर पर फॉस्फेट बफर्ड सलाइन में 2.5% घोल के रूप में होता है। इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी के लिए उपयोग किए जाने वाले अन्य स्थिरीकरण एजेंट ओस्मियम टेट्रॉक्साइड या यूरेनिल एसीटेट हैं।

इन एल्डिहाइड स्थिरीकरण एजेंटों की मुख्य क्रिया प्रोटीन में अमीनो समूहों को क्रॉस-लिंक करना है, फॉर्मेल्डिहाइड के मामले में मेथिलीन ब्रिज (\sCH2\s) के निर्माण के माध्यम से, या ग्लूटरलडिहाइड के मामले में C5H10 क्रॉस-लिंक द्वारा। यह प्रक्रिया, कोशिकाओं और ऊतकों की संरचनात्मक अखंडता को संरक्षित करते हुए, प्रोटीन, विशेष रूप से एंजाइम की जैविक कार्यक्षमता को नुकसान पहुंचा सकती है।

फॉर्मेलिन स्थिरीकरण से mRNA, miRNA और DNA का क्षरण होता है, साथ ही ऊतकों में प्रोटीन का विकृतीकरण और संशोधन भी होता है। हालांकि, उपयुक्त प्रोटोकॉल का उपयोग करके फॉर्मेलिन-फिक्स्ड, पैराफिन-एम्बेडेड ऊतकों से न्यूक्लिक एसिड और प्रोटीन का निष्कर्षण और विश्लेषण संभव है।

चयन और ट्रिमिंग

नमूने जमा करने के लिए उपयोग की जाने वाली वस्तुएं: (बायोप्सी) रैप, (बायोप्सी) स्पंज, (ऊतक प्रसंस्करण) कैसेट और (बायोप्सी) बैग।

चयन उन मामलों में प्रासंगिक ऊतक का चुनाव है जहां पूरे मूल ऊतक द्रव्यमान को आगे के प्रसंस्करण के माध्यम से डालने की आवश्यकता नहीं होती है। शेष भाग को स्थिर रखा जा सकता है यदि बाद में इसकी जांच करने की आवश्यकता हो।

ट्रिमिंग ऊतक के नमूनों को काटना है ताकि बाद में सेक्शनिंग के लिए प्रासंगिक सतहों को उजागर किया जा सके। यह कैसेट में फिट होने के लिए उपयुक्त आकार के ऊतक के नमूने भी बनाता है।

एम्बेडिंग (Embedding)

ऊतकों को एक कठोर माध्यम में एम्बेड किया जाता है, जो एक समर्थन के रूप में और ऊतक के पतले स्लाइस को काटने की अनुमति देने के लिए होता है। सामान्य तौर पर, पानी को पहले ऊतकों से हटा दिया जाना चाहिए (निर्जलीकरण) और एक ऐसे माध्यम से बदल दिया जाना चाहिए जो या तो सीधे जम जाता है, या एक मध्यवर्ती तरल (क्लीयरिंग) के साथ जो एम्बेडिंग मीडिया के साथ मिश्रणीय है।

पैराफिन वैक्स

पैराफिन वैक्स में एम्बेड किया जा रहा ऊतक वैज्ञानिक नमूना (ऊतक को धातु के सांचे के नीचे रखा जाता है, और इसे भरने के लिए अधिक पिघला हुआ पैराफिन डाला जाता है।)

प्रकाश माइक्रोस्कोपी के लिए, पैराफिन वैक्स सबसे अधिक उपयोग की जाने वाली एम्बेडिंग सामग्री है। पैराफिन पानी के साथ अमिश्रणीय है, जो जैविक ऊतक का मुख्य घटक है, इसलिए इसे पहले निर्जलीकरण चरणों की एक श्रृंखला में हटा दिया जाना चाहिए। नमूनों को पानी के शेष निशान को हटाने के लिए 100% इथेनॉल तक, उत्तरोत्तर अधिक केंद्रित इथेनॉल बाथ की एक श्रृंखला के माध्यम से स्थानांतरित किया जाता है। निर्जलीकरण के बाद एक क्लीयरिंग एजेंट (आमतौर पर जाइलीन, हालांकि अन्य पर्यावरणीय रूप से सुरक्षित विकल्प उपयोग में हैं) का उपयोग किया जाता है जो अल्कोहल को हटा देता है और मोम के साथ मिश्रणीय होता है, अंत में जाइलीन को बदलने और ऊतक में घुसपैठ करने के लिए पिघला हुआ पैराफिन वैक्स जोड़ा जाता है। अधिकांश ऊतक विज्ञान या हिस्टोपैथोलॉजी प्रयोगशालाओं में निर्जलीकरण, क्लीयरिंग और मोम घुसपैठ ऊतक प्रोसेसर में की जाती है जो इस प्रक्रिया को स्वचालित करते हैं। एक बार पैराफिन में घुसपैठ करने के बाद, ऊतकों को सांचों में उन्मुख किया जाता है जिन्हें मोम से भरा जाता है; एक बार स्थित हो जाने पर, मोम को ठंडा किया जाता है, जिससे ब्लॉक और ऊतक जम जाते हैं।

अन्य सामग्री

पैराफिन वैक्स हमेशा बहुत पतले सेक्शन (जो विशेष रूप से इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी के लिए महत्वपूर्ण होते हैं) को काटने के लिए पर्याप्त कठोर मैट्रिक्स प्रदान नहीं करता है। पैराफिन वैक्स ऊतक (टिश्यू) के सापेक्ष बहुत नरम भी हो सकता है, पिघले हुए वैक्स की गर्मी ऊतक को अवांछनीय तरीकों से बदल सकती है, या निर्जलीकरण (dehydrating) या क्लियरिंग रसायन ऊतक को नुकसान पहुंचा सकते हैं। पैराफिन वैक्स के विकल्पों में epoxy, acrylic, agar, gelatin, celloidin, और अन्य प्रकार के वैक्स शामिल हैं।

इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी में एपॉक्सी रेजिन सबसे अधिक उपयोग किए जाने वाले एम्बेडिंग मीडिया हैं, लेकिन ऐक्रेलिक रेजिन का भी उपयोग किया जाता है, विशेष रूप से जहां immunohistochemistry की आवश्यकता होती है।

ऊतकों को जमी हुई अवस्था में काटने के लिए, उन्हें जल-आधारित एम्बेडिंग माध्यम में रखा जाता है। पहले से जमे हुए ऊतकों को तरल एम्बेडिंग सामग्री, आमतौर पर जल-आधारित ग्लाइकोल, OCT, TBS, क्रायोजेन, या रेजिन के साथ सांचों में रखा जाता है, जिसे बाद में कठोर ब्लॉक बनाने के लिए जमा दिया जाता है।

सेक्शनिंग (Sectioning)

মূল নিবন্ধ: Microtome

हिस्टोलॉजिक नमूने को माइक्रोटोम पर काटा जा रहा है

लाइट माइक्रोस्कोपी के लिए, माइक्रोटोम में लगे चाकू का उपयोग ऊतक के सेक्शन (आमतौर पर 5-15 माइक्रोमीटर मोटे) काटने के लिए किया जाता है, जिन्हें ग्लास microscope slide पर माउंट किया जाता है। ट्रांसमिशन इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी (TEM) के लिए, ultramicrotome में लगे हीरे या कांच के चाकू का उपयोग 50 से 150 नैनोमीटर मोटे ऊतक सेक्शन काटने के लिए किया जाता है।

माइक्रोटोम के उत्पादन के लिए सीमित संख्या में निर्माता पहचाने जाते हैं, जिनमें वाइब्रेटिंग माइक्रोटोम शामिल हैं जिन्हें आमतौर पर vibratome कहा जाता है, जो मुख्य रूप से अनुसंधान और नैदानिक अध्ययनों के लिए होते हैं। इसके अतिरिक्त, Leica Biosystems अनुसंधान और नैदानिक अध्ययनों के संदर्भ में लाइट माइक्रोस्कोपी से संबंधित उत्पादों के उत्पादन के लिए जाना जाता है।

स्टेनिंग (Staining)

মূল নিবন্ধ: Staining

जैविक ऊतक में लाइट या इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोप में बहुत कम अंतर्निहित कंट्रास्ट होता है। Staining का उपयोग ऊतक को कंट्रास्ट देने के साथ-साथ रुचि की विशेष विशेषताओं को उजागर करने के लिए किया जाता है। जब स्टेन का उपयोग ऊतक के किसी विशिष्ट रासायनिक घटक (न कि सामान्य संरचना) को लक्षित करने के लिए किया जाता है, तो histochemistry शब्द का उपयोग किया जाता है।

लाइट माइक्रोस्कोपी

चूहे के trachea पर Masson's trichrome स्टेनिंग

Hematoxylin और eosin (H&E stain) ऊतक की सामान्य संरचना को दिखाने के लिए हिस्टोलॉजी में सबसे अधिक उपयोग किए जाने वाले स्टेन में से एक है। हेमेटोक्सिलिन कोशिका के केंद्रक को नीला रंग देता है; इओसिन, एक अम्लीय डाई, cytoplasm और अन्य ऊतकों को गुलाबी रंग के विभिन्न शेड्स में रंगता है।

H&E के विपरीत, जिसका उपयोग सामान्य स्टेन के रूप में किया जाता है, ऐसी कई तकनीकें हैं जो कोशिकाओं, कोशिकीय घटकों और विशिष्ट पदार्थों को अधिक चुनिंदा रूप से स्टेन करती हैं। एक सामान्य रूप से की जाने वाली हिस्टोकेमिकल तकनीक जो एक विशिष्ट रसायन को लक्षित करती है, वह Perls' Prussian blue प्रतिक्रिया है, जिसका उपयोग hemochromatosis जैसी बीमारियों में आयरन जमाव को प्रदर्शित करने के लिए किया जाता है। निसल पदार्थ के लिए Nissl method और Golgi's method (और संबंधित silver stains) जो neurons की पहचान करने में उपयोगी हैं, अधिक विशिष्ट स्टेन के अन्य उदाहरण हैं।

हिस्टोरैडियोलॉजी (Historadiography)

historadiography में, एक स्लाइड (कभी-कभी हिस्टोकेमिकली स्टेन की गई) का एक्स-रे किया जाता है। अधिक सामान्यतः, autoradiography का उपयोग उन स्थानों को देखने के लिए किया जाता है जहां शरीर के भीतर एक रेडियोधर्मी पदार्थ का परिवहन किया गया है, जैसे कि S phase में कोशिकाएं (जो DNA replication से गुजर रही हैं) जो ट्रिटिएटेड thymidine को शामिल करती हैं, या वे स्थान जहां रेडियोलेबल वाले nucleic acid प्रोब in situ hybridization में बंधते हैं। सूक्ष्म स्तर पर ऑटोरेडियोलॉजी के लिए, स्लाइड को आमतौर पर तरल परमाणु ट्रैक इमल्शन में डुबोया जाता है, जो सूखकर एक्सपोजर फिल्म बनाता है। फिल्म में व्यक्तिगत सिल्वर ग्रेन को dark field microscopy के साथ देखा जाता है।

इम्युनोहिस्टोकेमिस्ट्री (Immunohistochemistry)

মূল নিবন্ধ: immunohistochemistry

हाल ही में, antibodies का उपयोग विशेष रूप से प्रोटीन, कार्बोहाइड्रेट और लिपिड को देखने के लिए किया गया है। इस प्रक्रिया को immunohistochemistry कहा जाता है, या जब स्टेन एक fluorescent अणु होता है, तो इसे immunofluorescence कहा जाता है। इस तकनीक ने माइक्रोस्कोप के नीचे कोशिकाओं की श्रेणियों की पहचान करने की क्षमता को काफी बढ़ा दिया है। अन्य उन्नत तकनीकें, जैसे कि गैर-रेडियोधर्मी in situ हाइब्रिडाइजेशन, को इम्यूनोकेमिस्ट्री के साथ जोड़ा जा सकता है ताकि विशिष्ट डीएनए या आरएनए अणुओं की पहचान फ्लोरोसेंट प्रोब या टैग के साथ की जा सके, जिनका उपयोग इम्यूनोफ्लोरेसेंस और एंजाइम-लिंक्ड फ्लोरेसेंस प्रवर्धन (विशेष रूप से alkaline phosphatase और टायरामाइड सिग्नल प्रवर्धन) के लिए किया जा सकता है। Fluorescence microscopy और confocal microscopy का उपयोग अच्छी इंट्रासेल्युलर डिटेल के साथ फ्लोरोसेंट संकेतों का पता लगाने के लिए किया जाता है।

इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी

মূল নিবন্ধ: Electron microscope#Sample preparation

इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोपी के लिए heavy metals का उपयोग आमतौर पर ऊतक सेक्शन को स्टेन करने के लिए किया जाता है। Uranyl acetate और लेड साइट्रेट का उपयोग आमतौर पर इलेक्ट्रॉन माइक्रोस्कोप में ऊतक को कंट्रास्ट प्रदान करने के लिए किया जाता है।

विशेष तकनीकें

क्रायोसेक्शनिंग (Cryosectioning)

মূল নিবন্ধ: Frozen section procedure

चिकित्सा में अपनाई जाने वाली frozen section procedure के समान, क्रायोसेक्शनिंग हिस्टोलॉजी के लिए ऊतक के सेक्शन को तेजी से फ्रीज करने, काटने और माउंट करने की एक विधि है। ऊतक को आमतौर पर cryostat या फ्रीजिंग माइक्रोटोम पर सेक्शन किया जाता है। जमे हुए सेक्शन को ग्लास स्लाइड पर माउंट किया जाता है और विभिन्न ऊतकों के बीच कंट्रास्ट बढ़ाने के लिए स्टेन किया जा सकता है। अनफिक्स्ड जमे हुए सेक्शन का उपयोग उन अध्ययनों के लिए किया जा सकता है जिनमें ऊतकों और कोशिकाओं में एंजाइम स्थानीयकरण की आवश्यकता होती है। एंटीबॉडी-लिंक्ड immunofluorescence स्टेनिंग जैसी कुछ प्रक्रियाओं के लिए ऊतक निर्धारण (fixation) आवश्यक है। जमे हुए सेक्शन अक्सर tumor को सर्जिकल रूप से हटाते समय तैयार किए जाते हैं ताकि ट्यूमर मार्जिन की तेजी से पहचान की जा सके, जैसा कि Mohs surgery में होता है, या ट्यूमर की घातकता का निर्धारण करने के लिए, जब सर्जरी के दौरान आकस्मिक रूप से ट्यूमर का पता चलता है।

अल्ट्रामिक्रोटोमी (Ultramicrotomy)

Transmission electron microscope के नीचे Green algae

মূল নিবন্ধ: Ultramicrotomy

अल्ट्रामिक्रोटोमी transmission electron microscope (TEM) विश्लेषण के लिए अत्यंत पतले सेक्शन तैयार करने की एक विधि है। ऊतकों को आमतौर पर epoxy या अन्य प्लास्टिक रेजिन में एम्बेड किया जाता है। बहुत पतले सेक्शन (0.1 माइक्रोमीटर से कम मोटाई) को ultramicrotome पर हीरे या कांच के चाकू का उपयोग करके काटा जाता है।

आर्टिफैक्ट्स (Artifacts)

आर्टिफैक्ट्स ऊतक में ऐसी संरचनाएं या विशेषताएं हैं जो सामान्य हिस्टोलॉजिकल जांच में बाधा डालती हैं। आर्टिफैक्ट्स ऊतक की उपस्थिति को बदलकर और संरचनाओं को छिपाकर हिस्टोलॉजी में हस्तक्षेप करते हैं। ऊतक प्रसंस्करण आर्टिफैक्ट्स में फिक्सेटिव्स द्वारा निर्मित पिगमेंट, सिकुड़न, कोशिकीय घटकों का धुल जाना, विभिन्न ऊतक प्रकारों में रंग परिवर्तन और ऊतक में संरचनाओं का परिवर्तन शामिल हो सकते हैं। एक उदाहरण Zenker's fixative का उपयोग करके सेक्शन को फिक्स करने के बाद बचा हुआ मरकरी पिगमेंट है। फॉर्मेलिन फिक्सेशन भी अम्लीय परिस्थितियों में भूरे से काले रंग का पिगमेंट छोड़ सकता है।

इतिहास

अपनी प्रयोगशाला में Santiago Ramón y Cajal

17वीं शताब्दी में इतालवी Marcello Malpighi ने सूक्ष्म जैविक संस्थाओं का अध्ययन करने के लिए माइक्रोस्कोप का उपयोग किया; कुछ लोग उन्हें हिस्टोलॉजी और सूक्ष्म विकृति विज्ञान (microscopic pathology) के क्षेत्रों का संस्थापक मानते हैं। मालपिघी ने माइक्रोस्कोप के नीचे चमगादड़, मेंढक और अन्य जानवरों के अंगों के कई हिस्सों का विश्लेषण किया। फेफड़ों की संरचना का अध्ययन करते समय, मालपिघी ने इसके झिल्लीदार एल्वियोली और नसों और धमनियों के बीच बाल जैसी कनेक्शन को देखा, जिसे उन्होंने केशिकाएं (capillaries) नाम दिया। उनकी खोज ने यह स्थापित किया कि सांस के माध्यम से ली गई ऑक्सीजन रक्त प्रवाह में कैसे प्रवेश करती है और शरीर की सेवा करती है।

19वीं शताब्दी में हिस्टोलॉजी अपने आप में एक शैक्षणिक अनुशासन बन गया। फ्रांसीसी शरीर रचना विज्ञानी Xavier Bichat ने 1801 में शरीर रचना विज्ञान में ऊतक की अवधारणा पेश की, और "हिस्टोलॉजी" (Histologie) शब्द, जिसे "ऊतकों का अध्ययन" दर्शाने के लिए गढ़ा गया था, पहली बार 1819 में कार्ल मेयर की एक पुस्तक में दिखाई दिया। बिचैट ने इक्कीस मानव ऊतकों का वर्णन किया, जिन्हें हिस्टोलॉजिस्ट द्वारा वर्तमान में स्वीकृत चार श्रेणियों के तहत शामिल किया जा सकता है। हिस्टोलॉजी में चित्रों का उपयोग, जिसे बिचैट ने बेकार माना था, को Jean Cruveilhier द्वारा बढ़ावा दिया गया था।

1830 के दशक की शुरुआत में पुरकिंजे ने उच्च परिशुद्धता के साथ एक माइक्रोटोम का आविष्कार किया।

19वीं शताब्दी के दौरान कई फिक्सेशन तकनीकें Adolph Hannover (क्रोमेट्स और chromic acid के समाधान), फ्रांज शुल्ज़ और Max Schultze (osmic acid), Alexander Butlerov (formaldehyde) और Benedikt Stilling (फ्रीजिंग) द्वारा विकसित की गई थीं।

माउंटिंग (Mounting) तकनीकें रुडोल्फ हेडेनहेन (1824–1898) द्वारा विकसित की गई थीं, जिन्होंने गम अरेबिक (gum Arabic) का परिचय दिया; सलोमन स्ट्रिकर (1834–1898), जिन्होंने मोम और तेल के मिश्रण की वकालत की; और एंड्रयू प्रिचर्ड (1804–1884) जिन्होंने 1832 में गम/आइसिंगलास (isinglass) मिश्रण का उपयोग किया। उसी वर्ष, कनाडा बालसम (Canada balsam) का आगमन हुआ, और 1869 में एडविन क्लेब्स (1834–1913) ने बताया कि उन्होंने कुछ वर्षों से अपने नमूनों को पैराफिन में एम्बेड (embedded) किया था।

शरीर क्रिया विज्ञान या चिकित्सा के क्षेत्र में 1906 का नोबेल पुरस्कार ऊतक वैज्ञानिकों कैमिलो गोल्गी और सैंटियागो रेमन वाई काजल को प्रदान किया गया था। उनके पास एक ही छवियों की अलग-अलग व्याख्याओं के आधार पर मस्तिष्क की तंत्रिका संरचना की परस्पर विरोधी व्याख्याएं थीं। रेमन वाई काजल ने अपने सही सिद्धांत के लिए पुरस्कार जीता, और गोल्गी ने उस सिल्वर-स्टेनिंग तकनीक के लिए जिसे उन्होंने इसे संभव बनाने के लिए आविष्कार किया था।

भविष्य की दिशाएं

इन विवो (In vivo) ऊतक विज्ञान

इन विवो (in vivo) ऊतक विज्ञान (मुख्य रूप से MRI का उपयोग करके) के लिए तकनीक विकसित करने में रुचि है, जो डॉक्टरों को स्थिर ऊतक नमूनों के बजाय जीवित रोगियों में स्वस्थ और रोगग्रस्त ऊतकों के बारे में गैर-आक्रामक (non-invasively) तरीके से जानकारी एकत्र करने में सक्षम बनाएगी।

संदर्भ

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स्रोत: अंग्रेज़ी विकिपीडिया के “Histology” लेख का अनुवाद। मूल लेख: https://en.wikipedia.org/wiki/Histology यह अनुवाद स्वचालित रूप से तैयार किया गया है।